Resumen
Se aislaron microorganismos con actividad enzimática utilizando muestras de suelo provenientes de los humedales Torca, Guaymaral, Córdoba y La Conejera, ubicados en el norte de Bogotá. Usando la técnica de producción de halos de hidrólisis en agar almidón, carboximetilcelulosa y crecimiento en agar extracto aserrín, se seleccionaron 51 cepas: 18 microorganismos amilolíticos, 11 celulolíticos y 22 lignolíticos.
La microscopia microbiana mostró que el 50,98% de las cepas seleccionadas son bacilos Gram positivos, el 33,33% bacilos Gram negativos y el 15,69% hongos. Los medios de cultivo y las técnicas de evaluación de actividad enzimática permitieron el aislamiento de microorganismos en cada uno de los humedales, siendo las cepas obtenidas de La Conejera las de mayor potencial enzimático. Con los microorganismos aislados productores de celulasas, lignocelulasas y amilasas se realizará la producción de enzimas que serán utilizadas en la degradación de materiales vegetales para la obtención de etanol, extractos vegetales y otros productos de interés dentro de los proyectos de formación del Centro de Gestión Industrial.
Citas
Allinge, N., Cava, M., & De Jongh, D. (1976). Química orgánica. España: Editorial Barcelona Reverté.
Atlas, R., & Barton, R. (2005). Ecología microbiana y microbiología ambiental. España: Pearson Educación S. A.
Cuamatzi, O. (2004). Bioquímica de procesos metabólicos. España: Editorial Barcelona Reverte.
Dávila, G., & Vázquez-Duhalt, R. (2006). Enzimas lignocelulolíticas fúngicas para fines ambientales.Mensaje Bioquímico, pp. 29-55.
Gaitán, D., & Pérez, L. (2007). Aislamiento y evaluación de
microorganismos celulolíticos a partir de residuos vegetales frescos y compost generados en cultivo de crisantemo. Tesis pregrado. Bogotá, Colombia: Pontificia Universidad Javeriana.
Lynd, L., Weimer, P., Zyl, H., & Preterius, I. (2002). Microbial cellulose utilization: Fundamentals and Biotechnology. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 577-583.
Miller, G. (1959). Use of Dinitrosalisyc Acid Reagent for determination of reducing sugar. Analytical Chemistry, 426-428.
Montor, J. (2013). Caracterización de amilasas producidas por bacterias de suelo cultivadas con caña de azúcar. San Juan Bautista Tuxtepec, Oaxaca, México.
Mora, L. C., & Zapata, H. V. (2006). Aislamiento y caracterización de microorganismos con actividad lipolítica provenientes de sedimentos del humedal El Jaboque. Bogotá, Colombia: Acta Biológica Colombiana, 11 (2), 109.
Ortiz, M. (2009). Aproximaciones a la comprensión de la degradación de la lignina. Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Redalyc, 3 (2), 137-144.
Pedroza, A., Matiz, A., Quevedo, B., & Aguirre, A. (2007). Manual
de introducción a la biotecnología. Bogotá: Editorial Pontificia Universidad Javeriana.
Rodríguez, M. (2000). Towards identifying biochemical markers for post harvest physiological deterioration in Cassava. Ph.D. thesis. United Kingdom: University of Bath.
Sánchez, C., Mejía, C., Figueroa, C.,Esquivia, M., Agudelo, L., M, Z., y otros. (2005). Estudio de cepas nativas amilolíticas. VITAE Revista de la Facultad de Química Farmacéutica, 12 (2), 21-28.
Suescún, G., Bernal, J., & Martínez, P. (s. f.). Degradación de benceno por microorganismos rizosféricos aislados de Limnobium laevigatum en el humedal La Conejera. Bogotá-Colombia: Cuarto Simposio Internacional de Desarrollo Sustentable.
Teather, R., & P, W. (1982). Use of congo red-polysaccharideinteraction in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen. Applied Environmental Microbiology, 43, 777-780.
Vihinen, M., & P, M. (1989). Microbial amilolytic enzymes. Biotech. Lab, 329-418.
